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Utilisateur:EdouardHue/Brouillon/Agents biologiques pathogènes de l’abeille domestique

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Agents biologiques
Agent pathogène Maladie ou nom commun Nature Signes cliniques Importance
Prédateurs
Vespa velutina[1],[2] Frelon asiatique Hyménoptère (insecte) Vol de frelons devant la ruche, prédation Affaiblissement des colonies par diminution du nombre d'ouvrières
Aethina tumida[1],[3] Petit coléoptère de la ruche Coléoptère (insecte) Galeries dans les rayons, destruction du couvain, excréments dans le miel Perte de récolte ou de colonies
Galleria mellonella[1],[3] Fausse teigne de la cire, grande fausse teigne Lépidoptère (insecte) Altération des ruches et des cadres, galeries dans les rayons, rayons tapissés d’une toile blanche Pertes de colonies déjà affaiblies avant infestation par ce parasite. Transmission possible d’agents pathogènes (loque américaine)
Achroia grisella[1],[3] Petite teigne des ruches, petite fausse teigne Lépidoptère (insecte) Altération des cadres, galeries dans les rayons, couvain chauve
Parasites
Varroa destructor[1],[3] Varroase, varroatose, varroose Mésostigmate (acarien) Abeilles traînantes, abeilles aux ailes atrophiées, cannibalisme (couvain), lors de mortalité hivernale petit paquet d’abeilles restant dans la ruche avec des quantités importantes de miel et de pollen stockées Taux élevé de mortalité hivernale, transmission d’autres agents pathogènes
Acarapis woodi[1],[3] Acariose des trachées, acarapiose Trombidiforme (acarien) Abeilles paralysées ou/et incapables de voler (abeilles traînantes ou agrippées aux brins d’herbe) Raccourcissement de la durée de vie des abeilles, augmentation de la mortalité au printemps, mortalité hivernale élevée, diminution de la production de couvain et de miel
Tropilaelaps clareae[1],[3] Tropilaelose Mésostigmate (acarien) Abeilles rampantes, malformations des ailes, des pattes et de l’abdomen, couvain irrégulier Réduction de la longévité, mortalité de colonies
Braula caeca[1],[3] Pou de l’abeille, braule aveugle Braulidae (insecte) Ectoparasites présents en priorité sur le thorax de la reine L’infestation massive de la reine peut provoquer une diminution de la ponte et la mort de la reine
Malpighamoeba mellificae (syn. Malpighiella mellificae)[1] Amibiase, amoebose Protozoaire Abeilles incapables de voler, abdomen gonflé, diarrhée, taches fécales jaunâtres et rondes sur la planche d’envol, couvain clairsemé Affaiblissement et dépérissement des colonies
Champignons
Nosema apis et Nosema ceranae[1] Nosémose Microsporidie (champignon) Difficultés de vol, abdomen gonflé, supersédure, réduction de la collecte de pollen, diminution ou arrêt de la ponte, production de miel réduite Dépeuplement et diminution de la force de la colonie, diminution de la longévité, apparition de maladies secondaires, mortalité hivernale élevée
Ascosphaera apis[1],[3] Ascosphérose, couvain plâtré Ascomycète (champignon) Larves d’abeilles mortes, momifiées et desséchées, recouvertes d’un mycélium blanc, et/ou de corps fructifères noirs, momies déposées au trou de vol et devant la ruche Affaiblissement de colonies
Aspergillus flavus[1] Aspergillose, couvain pétrifié Ascomycète (champignon) Agitation des abeilles, vol laborieux voire impossible, filaments jaune verdâtre sortant par les orifices naturels de l’abeille morte, couvain clairsemé Affaiblissement de colonies
Bactéries
Paenibacillus larvae[1],[3] Loque américaine, loque maligne, loque gluante, couvain putréfié Bactérie sporulée Atteinte du couvain operculé, larves mortes de couleur brunâtre, transformées en une masse visqueuse filante, prépupes dont la forme et la segmentation sont altérées. Écailles loqueuses adhérentes à la paroi de l’alvéole Mortalité du couvain, affaiblissement et mortalité de colonies
Melissococcus plutonius (agent primaire), Paenibacillus alvei et Enterococcus faecalis (agents secondaires)[1],[3] Loque européenne, loque bénigne, paraloque, couvain aigre, couvain acide Bactérie à capsule, non sporulée Atteinte du couvain non operculé, larves de couleur jaunâtre puis brunâtre, se rétractant. Écailles loqueuses de couleur brun foncé à noir dans l’alvéole, facilement détachable de leur support Mortalité du couvain, affaiblissement et mortalité de colonies
Spiroplasma apis, Spiroplasma melliferum[1] Spiroplasmose Bactérie Symptômes nerveux Mortalité de butineuses. Affaiblissement
Bacillus apisepticus[1] Septicémie Bactérie Difficultés de vol Affaiblissement
Bacillus alvei, Bacillus laterosporus, Bacillus gracilesporus, Bacillus apidarium et Bacillus feum[1] Couvain refroidi Bactéries Agents se multipliant dans les abeilles immatures (larves) mortes d’avoir eu trop froid Affaiblissement

En 2007, dix-huit virus affectant le genre Apis étaient connus, les plus répandus étant les virus des ailes déformées, du couvain sacciforme, du Cachemire, de la paralysie aiguë, de la paralysie chronique et de la cellule royale noire[4]. Les virus marqués NS dans le tableau ci-dessous n'ont pas de symptômes spécifiques connus en environnement naturel.

Virus
Virus Symptômes lors d'une infection expérimentale Conséquences et symptômes à l'échelle de la colonie
Nomenclature anglaise Maladie ou nom commun
ABPV ou APV[1],[4] Virus de la paralysie aiguë Symptômes de paralysie précoce (2-4 j), mortalité rapide (3-5 j) Participerait aux affaiblissements, associé à Varroa destructor en entraînant la mortalité d’ouvrières et de couvain, NS
ArkBV[réf. nécessaire] Virus de l'Arkansas Responsable de la mort d'abeilles âgées de 15 à 25 jours.
BQCV[1],[4] Virus de la cellule royale noire Diminution de la durée de vie des abeilles infectées, dépendant de Nosema apis pour l’infection des adultes par voie trophique Participerait à la mortalité d’ouvrières, associé à Nosema apis. Entraînerait la mortalité de larves de reines, NS
BVX[1] Virus X de l'abeille Pas de symptôme, raccourcit la durée de vie des adultes Participerait à la mortalité d’ouvrières, associé à Malpighamoeba mellificae, NS
BVY[1] Virus Y de l'abeille Dépendant de Nosema apis pour l’infection des adultes, augmentation de la pathogénicité de Nosema apis Participerait à la mortalité d’ouvrières, associé à Nosema apis, NS
CBPV ou CPV[1],[4],[5] Paralysie chronique, maladie noire ou mal de mai Symptômes paralytiques (5 j) plusieurs jours avant la mort (7 j) Entraîne de la mortalité, parfois importante, d’ouvrières dépilées et noires avec des symptômes de tremblements
CWV[1] Virus des ailes opaques Pas de symptôme précis, études sujettes à controverse Conséquences mal connues. La dissémination du virus serait associée à Varroa destructor, NS
DWV[1],[4] Virus des ailes déformées Déformations des ailes et du corps des abeilles naissantes Participe aux affaiblissements, associé à Varroa destructor en entraînant des mortalités d’ouvrières et des déformations d’abeilles naissantes
EBV[réf. nécessaire] Virus égyptien Provoque la mortalité du couvain juste avant la nymphose
FV[1] Virus filamenteux Pas de symptôme, ni mortalité Conséquences mal connues. Virus considéré comme commun mais non pathogène, NS
IAPV[1],[6] Virus israélien de la paralysie aiguë Mortalité rapide (4 j) sans symptôme Fortement corrélé au syndrome d'effondrement des colonies aux États-Unis[7]. En l’absence de lien pathogénique démontré, considéré comme marqueur significatif
IIV6 ou CIV[8] La co-infection des colonies avec Nosema cerenae est constatée quasi-systématiquement dans les cas d'effondrement des colonies
KBV[1],[4] Virus du Cachemire Mortalité rapide (3 j) sans symptôme Participerait aux affaiblissements, associé à Varroa destructor, NS
KV[9],[10] Études incomplètes Ouvrières anormalement agressives, vraisemblablement non pathogène, associé à Varroa destructor, NS
SBV[1],[4] Virus du couvain sacciforme Mortalité de larves en forme de sac Mortalité de larves en forme de sac (fluide entre le tégument et le corps), entraînant des affaiblissements de colonies
SBPV[1] Virus de la paralysie lente Symptômes de paralysie tardive (10-11 j), suivie de mortalité (12 j) Participerait à la mortalité d’ouvrières, associé à Varroa destructor, NS
VDV-1[11],[12] Études incomplètes Effets non décrits, associé à Varroa destructor

Notes et références

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  1. ↑ a b c d e f g h i j k l m n o p q r s t u v w x y z aa ab et ac Agence française de sécurité sanitaire des aliments, Mortalités, effondrements et affaiblissements des colonies d’abeilles, (présentation en ligne, lire en ligne), p. 33–38, 168–191
  2. ↑ Thomas Mollet, Claudia de la Torre et Jacques Blot, « Vespa velutina – frelon asiatique », Bulletin technique apicole, Office pour l'information et la documentation en apiculture, vol. 34, no 4,‎ , p. 205–210 (lire en ligne, consulté le )
  3. ↑ a b c d e f g h i et j Nicola Bradbear, Le rôle des abeilles dans le développement rural : Manuel sur la récolte, la transformation et la commercialisation des produits et services dérivés des abeilles, Rome, Organisation des Nations Unies pour l'alimentation et l'agriculture, (ISSN 10209727[à vérifier : ISSN invalide], présentation en ligne, lire en ligne), chap. 15 (« Obstacles au développement »), p. 177–186
  4. ↑ a b c d e f et g (en) Yan Ping Chen et Reinhold Siede, « Honey Bee Viruses », Advances in Virus Research, Academic Press, vol. 70,‎ , p. 33-80 (ISBN 9780123737281, ISSN 0065-3527, DOI 10.1016/S0065-3527(07)70002-7, présentation en ligne)
  5. ↑ (en) Magali Ribière, Jean-Paul Faucon et Michel Pépin, « Detection of chronic honey bee (Apis mellifera L.) paralysis virus infection: application to a field survey », Apidologie, EDP Sciences, vol. 31, no 5,‎ , p. 567–577 (ISSN 12979678[à vérifier : ISSN invalide], OCLC 38523326, DOI 10.1051/apido:2000147, lire en ligne, consulté le )
  6. ↑ (en) Eyal Maori, Shai Lavi, Rita Mozes-Koch, Yulia Gantman, Yuval Peretz, Orit Edelbaum, Edna Tanne et Ilan Sela, « Isolation and characterization of Israeli acute paralysis virus, a dicistrovirus affecting honeybees in Israel: evidence for diversity due to intra- and inter-species recombination », Journal of General Virology, Society for General Microbiology, vol. 88,‎ , p. 3428–3438 (DOI 10.1099/vir.0.83284-0, lire en ligne, consulté le )
  7. ↑ (en) Diana L. Cox-Foster et et al., « A Metagenomic Survey of Microbes in Honey Bee Colony Collapse Disorder », Science, American Association for the Advancement of Science, vol. 318,‎ , p. 283-287 (DOI 10.1126/science.1146498, lire en ligne, consulté le )
  8. ↑ (en) Jerry J. Bromenshenk, Colin B. Henderson, Charles H. Wick, Michael F. Stanford, Alan W. Zulich, Rabih E. Jabbour, Samir V. Deshpande, Patrick E. McCubbin et et al., « Iridovirus and Microsporidian Linked to Honey Bee Colony Decline », PLoS ONE, Université de Californie, vol. 5, no 10,‎ (DOI 10.1371/journal.pone.0013181)
  9. ↑ (en) Tomoko Fujiyuki, Hideaki Takeuchi, Masato Ono, Seii Ohka, Tetsuhiko Sasaki, Akio Nomoto et Takeo Kubo, « Novel insect picorna-like virus identified in the brains of aggressive worker honeybees », Journal of Virology, American Society for Microbiology, vol. 78, no 3,‎ , p. 1093–1100 (ISSN 0022-538X, PMID 14722264, DOI doi:10.1128/JVI.78.3.1093–1100.2004, lire en ligne, consulté le )
  10. ↑ (en) Tomoko Fujiyuki, Seii Ohka, Hideaki Takeuchi, Masato Ono, Akio Nomoto et Takeo Kubo, « Prevalence and Phylogeny of Kakugo Virus, a Novel Insect Picorna-Like Virus That Infects the Honeybee (Apis mellifera L.), under Various Colony Conditions », Journal of Virology, American Society for Microbiology, vol. 80, no 23,‎ , p. 11528–11538 (ISSN 0022-538X, PMID 16971448, DOI doi:10.1128/JVI.00754-06, lire en ligne, consulté le )
  11. ↑ (en) J.R. Ongus, D. Peters, J.M. Bonmatin, E. Bengsch, J.M. Vlak et M.M. van Oers, « Complete sequence of a picorna-like virus of the genus Iflavirus replicating in the mite Varroa destructor », Journal of General Virology, The Society for General Microbiology, vol. 85, no 12,‎ , p. 3747–3755 (PMID 15557248, DOI 10.1099/vir.0.80470-0, lire en ligne, consulté le )
  12. ↑ (en) J.R. Ongus, Varroa destructor virus 1: A new picorna-like virus in Varroa mites, (ISBN 9085043638, lire en ligne)
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